Page 59 - 2025年第56卷第10期

（1）前期驯养。实验河道注水后晾晒 3 d，并确保河道水深不低于 0.5 m，pH 值稳定在 7 ~ 8 之间，
水体溶解氧浓度达到 6 mg/L 以上。通过水温调节装置使各实验河道达到目标水温，水温误差不超
过±0.2 ℃。各实验河道投入实验鱼均不少于 10 条。实验鱼实验前驯养 3 d，以适应实验环境，保持
活性。
（2）流场调节。水泵开启后，通过调整水泵流量和整流栅闸门开度，将各实验河道流速稳定在目
标流速，误差不超过±0.02 m/s。
（3）水流刺激。流场稳定后，对实验鱼群进行间隔水流刺激，单次刺激 3 h 后休息 1 h，每日进行 5
组实验，实验周期 10 d。同时，分别在实验第 5、10 d（实验周期结束），挑选活性较好的 4 ~ 5 条实验
鱼，进行生物学测量和尾部静脉抽血，记录体重、体长、性腺、重量等指标。
（4）血 清 样 本 提 取 。 对 实 验 鱼 麻 醉 后 进 行 尾 部 静 脉 抽 血 ， 使 用 HERMLE Z326 型 低 温 离 心 机 以
10 000 r/min 的速度离心 5 min，取其上部清液存入 2 ml 封闭试剂管中。为防止偶然误差，每个实验情
景的血清样本不低于 8 个。
（5）性 激 素 浓 度 测 定 。 以 血 清 中 雌 二 醇（E2）、 睾 酮（T）浓 度 作 为 测 量 指 标 ， 采 用 酶 标 抗 体 法
（Enzyme-Linked Immunosorbent Assay）进行分析测试，在 450 nm 波长下用酶标仪分别测定雌二醇和睾
酮吸光度，并基于标准品吸光度计算样品浓度。
2.3 数据处理方法 （1）基础数据分析：计算各实验鱼雌二醇浓度、睾酮浓度相比对照组增长幅度，
计算公式如下：
ΔE = （E - E ） /E （1）
exp control control
ΔT = （T - T ） /T （2）
exp control control
式中：ΔE 为雌二醇浓度增幅，%；E 、E 分别为实验组、对照组雌二醇浓度，pg/ml；ΔT 为睾酮浓
exp control
度增幅，%；T 、T 分别为实验组、对照组睾酮浓度，pg/ml。
exp control
（2）显著性和相对重要性分析：通过方差分析，确定水温、流速及二者交互作用对 ΔE 和 ΔT 的 F
值和显著性水平；采用多元线性回归模型，分别建立 ΔE 和 ΔT 随水温、流速变化的回归方程；通过对
比多元线性回归模型的标准化回归指数，分析水温、流速对 ΔE 和 ΔT 的相对重要性；采用 R 语言
relaimpo 回归模型，定量分析水温和流速对 ΔE 和 ΔT 的贡献率。

3 实验结果分析

3.1 性激素浓度随水温变化规律 不同水温情景下雌二醇浓度增幅（ΔE）、睾酮浓度增幅（ΔT）统计结
果如图 2 所示。在 12 ~ 22 ℃的水温范围内，在相同的水流刺激下，随着水温上升，草鱼体内的性激素
浓度呈现波动增加趋势。12 ℃水温时，即水流刺激组的雌二醇和睾酮浓度与静水对照组相比无明显差
异，表明在该水温条件下，水流刺激对草鱼性腺发育没有显著影响；当水温超过 14 ℃后，实验鱼雌二
醇浓度逐步升高，尤其是在 16 ~ 20 ℃水温区间，超过 90% 实验鱼的雌二醇浓度显著高于静水对照组，
证实了水温升高对草鱼性激素分泌和性腺发育具有促进作用。
12 ~ 22 ℃的水温范围内，在低（0.3 m/s）、中（0.6 m/s）、高（0.9 m/s）三种不同流速刺激下，ΔE 和
ΔT 均随水温上升呈现先增加、后减少的变化特征：
（1）在低、中流速刺激下，ΔE 的平均值在 16 ℃达到上升拐点，随后分别稳定在 10% 和 30%（即实
验组平均雌二醇浓度相比对照组增加 10% 和 30%，下同）；当水温升高至 22 ℃时，ΔE 显著下降，均值
降幅超过三分之一。而在高流速刺激下，ΔE 的上升拐点则提前到 14℃，且在 14 ~ 22 ℃区间 ΔE 均值稳
定在 30% 左右。
（2）在低、中流速刺激下，ΔT 变化趋势与 ΔE 类似，同样是在水温达到 16 ℃左右 ΔT 出现上升拐
点。但 14 ℃时，低、中、高流速刺激下 ΔT 均值都低于 5%；超过 20 ℃后，ΔT 仍呈现下降趋势，但其
下降幅度远低于 ΔE。

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